Zu den Inhalten springen

Klinik für Innere Medizin IHämatologie, Onkologie und Stammzelltransplantation

Über unser Labor

Die moderne Onkologie strebt nach immer präziseren, gezielteren und personalisierten diagnostischen und therapeutischen Mitteln im Kampf gegen Krebserkrankungen. Der Nachweis von Biomarkern aus Körperflüssigkeiten (sog. Liquid Biopsy) spielt hierbei eine immer größere Rolle. Im engeren Sinne bezeichnet der Begriff Liquid Biopsy in diesem Zusammenhang den Nachweis von im Blut zirkulierender Tumor-DNA (ctDNA) / RNA oder zirkulierenden Tumorzellen.

Die Liquid Biopsy ist durch einige entscheidende Vorteile gekennzeichnet: Sie ist durch eine einfache Blutentnahme zu jedem beliebigen Zeitpunkt nicht-invasiv durchführbar. Deshalb kann sie eine Alternative zur konventionellen Gewebe-Biopsie sein, wenn diese aus verschiedenen Gründen nicht durchgeführt werden kann oder Tumormaterial nicht ausreichend vorhanden ist. Durch die hohe Spezifität und Sensitivität eignet sich die Liquid Biopsy hervorragend zur Bestimmung von Blut-Biomarkern zur Verlaufsbeobachtung von Krebserkrankungen. Außerdem bildet insbesondere ctDNA im Blut von Patienten alle Tumormanifestationen im Körper ab und kann daher zur Analyse der Tumor-Heterogenität herangezogen werden.

Im Liquid Biopsy Labor der Klinik für Innere Medizin I des Universitätsklinikums Freiburg entwickeln und optimieren wir PCR-basierte Methoden (insb. digital droplet PCR, ddPCR) und Next-Generation Sequencing- (NGS-)- Technologien für die translationale Biomarker-Forschung und bringen sie in der klinischen Routine zur Anwendung.

Das Liquid Biopsy Labor entwickelt und etabliert PCR-basierte Testverfahren (digital droplet PCR, ddPCR) zur Untersuchung von Tumor-Mutationen im Blut von Krebspatienten. In der folgenden Übersicht finden Sie die bisher von uns entwickelten Assays, welche in Forschungsprojekten zur Beantwortung wissenschaftlicher Fragestellungen zum Einsatz kommen: Übersicht etablierte ddPCR-Assays

Drei dieser ddPCR-Assays können in unserem Labor angefordert werden:

EGFR T790M: Diese Mutation spielt bei Patienten mit fortgeschrittenem Nichtkleinzelligem Lungenkarzinom (NSCLC) und einer aktivierenden EGFR-Aberration, bei denen es unter Therapie mit einem EGFR Tyrosinkinase-Inhibitor (TKI) zu einem Progress und somit zu einer Resistenz gekommen ist, eine wichtige Rolle.

KRAS Kodon 12/13: Das KRAS-Gen gehört zu den häufig somatisch mutierten Genen in diversen humanen Tumoren (insbes. Kolonkarzinom, Pankreaskarzinom, Lungenkarzinom). Diese somatische Mutationen führen zu einer konstitutiven Aktivierung des KRAS-Proteins und damit des RAS/RAF/MEK/ERK-Signalweges unter Ausschluss einer Regulation durch EGFR.

BRAF V600E: Die BRAF V600E-Mutation führt zu einer Aktivierung des BRAF-Onkogens und damit zu unkontrolliertem Zellwachstum. Diese Mutation spielt eine wichtige Rolle in unterschiedlichen Krebsarten (insbes. Malignes Melanom, Kolonkarzinom, Schilddrüsenkarzinom, Haarzell-Leukämie oder Lungenkarzinom), wobei zielgerichtete Therapien verfügbar sind (sog. BRAF-Inhibitoren).

Im Folgenden finden Sie Informationen zur Anforderung eines Liquid Biopsy-Tests zur Analyse von EGFR T790M, KRAS Kodon 12/13 und BRAF V600E und eine Anleitung zur korrekten Entnahme von Blut und Verschickung des Materials an unser Labor:

Die Forschungsaktivitäten des Liquid Biopsy Lab Freiburg umfassen sowohl die Entwicklung und Optimierung modernster Liquid Biopsy-Analyseverfahren (Next-Generation Sequencing [NGS], digital droplet PCR [ddPCR]) als auch deren Anwendung zur translationalen Erforschung verschiedener Krebsbiomarker.

Unsere Forschungsprojekte beinhalten die folgenden Tumor-Entitäten:

  • Maligne Melanome
  • Nicht-kleinzellige Lungenkarzinome (NSCLC)
  • Kolonkarzinome
  • Gastrointestinale Stromatumoren (GIST)
  • Sarkome [Link Wehrle Lab]
  • Primäre Lymphome des zentralen Nervensystems (PCNSL) [Link Scherer Lab]
  • Diffuse großzellige B-Zell-Lymphome (DLBCL) [Link Scherer Lab]
  • Glioblastome und Lower-grade Gliome (LGG) [Link Scherer Lab]

Kollaborationen intern:

  • Prof. Dr. Dr. Melanie Börries, Insitut für Bioinformatik und System-Medizin
  • Prof. Dr. Marco Prinz, Institut für Neuropathologie
  • Prof. Dr. Silke Lassmann, Institut für Klinische Pathologie
  • Prof. Dr. Dr. Meyer, Klinik für Nuklearmedizin
  • Dr. Peter Bronsert, Institut für Klinische Pathologie
  • Dr. Frank Meiß, Klinik für Dermatologie und Venerologie
  • Dr. Elisabeth Schorb, Klinik für Innere Medizin I
  • Dr. Dietmar Pfeifer, Klinik für Innere Medizin I
  • Dr. Miguel Waterhouse, Klinik für Innere Medizin I
  • Dr. Peter Reinacher, Abteilung Stereotaktische und Funktionelle Neurochirurgie
  • Dr. Dieter Hendrik Heiland, Klinik für Neurochirurgie
  • PD Dr. Simone Hettmer, Pädiatrische Hämatologie und Onkologie
  • Dr. David Braig, Klinik für Plastische und Handchirurgie

Kollaborationen extern:

  • Prof. Dr. Nikolas von Bubnoff, Universitätsklinikum Lübeck
  • Dr. Ralph Fritsch, Universitätsspital Zürich
  • Prof. Dr. Gerald Illerhaus, Klinikum Stuttgart
  • PD Dr. Dr. Benjamin Kasenda, Klinikum Stuttgart
  • Dr. Lorenz Thurner, Universitätsklinikum des Saarlandes, Homburg/Saar
  • Ash A. Alizadeh MD/PhD, Stanford University
  • David M. Kurtz MD/PhD, Stanford University
  • Henning Stehr PhD, Stanford University

Leitung:

Dr. Florian Scherer, Arzt
E-Mail: florian.scherer@uniklinik-freiburg.de

Dr. Julius Wehrle, Arzt
E-Mail: julius.wehrle@uniklinik-freiburg.de

Frühere Leitung:

Prof. Dr. Nikolas von Bubnoff (Ärztlicher Direktor Universitätsklinikum Lübeck)
E-Mail: Nikolas.vonBubnoff@uksh.de

Mitarbeiter (alphabetisch):

  • Maximilian Deuter, cand. med.
  • Martina Jolic, MTA
  • Felipa Merkel, cand. med.
  • Dr. Jan Mitschke, Bioinformatiker
  • Ulrike Philipp, MTA
  • Dr. Michael Rassner, Arzt
  • Silvia Waldeck, PhD-Student

Alumni:

  • Jan Braune, cand. med


Kontakt:

Universitätsklinikum Freiburg
Klinik für Innere Medizin I – Liquid Biopsy Labor 

Ulrike Philipp oder Martina Jolic
Hugstetter Straße 55
79106 Freiburg

Telefon: +49 761 270 33850

E-Mail:
ulrike.philipp@uniklinik-freiburg.de
oder
martina.jolic@uniklinik-freiburg.de

In Fett ==> Labormitglieder | * ==> Co-Erstautoren

2019

  1. Dynamic Risk Profiling Using Serial Tumor Biomarkers for Personalized Outcome Prediction
    CELL
    Kurtz DM*, Esfahani MS*, Scherer F*, Soo J, Jin MC, Liu CL, Newman AM, Dührsen U, Hüttmann A, Casasnovas O, Westin JR, Ritgen M, Böttcher S, Langerak AW, Roschweski M, Wilson WH, Gaidano G, Rossi D, Bahlo J, Hallek M, Tibshirani R, Diehn M, Alizadeh AA
    2019. doi:https://doi.org/10.1016/j.cell.2019.06.011
  2. Circulating cKIT and PDGFRA DNA indicates disease activity in Gastrointestinal Stromal Tumor (GIST) INTERNATIONAL JOURNAL OF CANCER
    Jilg S, Rassner M, Maier J, Waldeck S, Kehl V, Follo M, Philipp U, Sauter A, Specht K, Mitschke J, Lange T, Bauer S, Jost PJ, Peschel C, Duyster J, Gaiser T, Hohenberger P, von Bubnoff N
    2019. doi:10.1002/ijc.32282
  3. Capturing Tumor Heterogeneity and Clonal Evolution by Circulating Tumor DNA Profiling
    RECENT RESULTS CANCER RES.
    Scherer F
    2020;215:213-230. doi: 10.1007/978-3-030-26439-0_11

2018

  1. Circulating Tumor DNA Measurements As Early Outcome Predictors in Diffuse Large B-Cell Lymphoma JOURNAL OF CLINICAL ONCOLOGY
    Kurtz DM*, Scherer F*, Jin MC, Soo J, Craig AFM, Esfahani MS, Chabon JJ, Stehr H, Liu CL, Tibshirani R, Maeda LS, Gupta NK, Khodadoust MS, Advani RH, Levy R, Newman AM, Duehrsen U, Huttmann A, Meignan M, Casasnovas RO, Westin JR, Roschewski M, Wilson WH, Gaidano G, Rossi D, Diehn M, Alizadeh AA
    2018. doi: 10.1200/JCO.2018.78.5246
  2. Extracellular vesicles or free circulating tumor DNA: where to search for BRAF and cKIT mutations? NANOMEDICINE
    Klump J, Philipp U, Follo M, Eremin A, Lehmann H, Nestel S, von Bubnoff N, Nazarenko I
    2018. doi:10.1016/j.nano.2017.12.009

2017

  1. High-throughput sequencing for noninvasive disease detection in hematologic malignancies
    BLOOD
    Scherer F*, Kurtz DM*, Diehn M, Alizadeh AA
    2017. doi:10.1182/blood-2017-03-735639
  2. Early Detection of Molecular Residual Disease in Localized Lung Cancer by Circulating Tumor DNA Profiling
    CANCER DISCOVERY
    Chaudhuri AA, Chabon JJ, Lovejoy AF, Newman AM, Stehr H, Azad TD, Khodadoust MS, Esfahani MS, Liu CL, Zhou L, Scherer F, Kurtz DM, Say C, Carter JN, Merriott DJ, Dudley JC, Binkley MS, Modlin L, Padda SK, Gensheimer MF, West RB, Shrager JB, Neal JW, Wakelee HA, Loo BW Jr, Alizadeh AA, Diehn M
    2017. doi: 10.1158/2159-8290.CD-17-0716
  3. A specific spectral signature of serum and plasma-derived extracellular vesicles for cancer screening
    NANOMEDICINE
    Krafft C, Wilhelm K, Eremin A, Nestel S, von Bubnoff N, Schultze-Seemann W, Popp J,
    Nazarenko I
    2017. doi:10.1016/j.nano.2016.11.016
  4. Liquid Biopsy: Approaches to Dynamic Genotyping in Cancer
    ONCOLOGY RESEARCH AND TREATMENT
    von Bubnoff N
    2017. doi:10.1159/000478864

2016

  1. Distinct biological subtypes and patterns of genome evolution in lymphoma revealed by circulating tumor
    DNA SCIENCE TRANSLATIONAL MEDICINE
    Scherer F*, Kurtz DM*, Newman AM*, Stehr H, Craig AF, Esfahani MS, Lovejoy AF, Chabon JJ, Klass DM, Liu CL, Zhou L, Glover C, Visser BC, Poultsides GA, Advani RH, Maeda LS, Gupta NK, Levy R, Ohgami RS, Kunder CA, Diehn M, Alizadeh AA
    2016. doi:10.1126/scitranslmed.aai8545
  2. Integrated digital error suppression for improved detection of circulating tumor DNA
    NATURE BIOTECHNOLOGY
    Newman AM*, Lovejoy AF*, Klass DM*, Kurtz DM, Chabon JJ, Scherer F, Stehr H, Liu CL, Bratman SV, Say C, Zhou L, Carter JN, West RB, Sledge GW, Shrager JB, Loo BW Jr, Neal JW, Wakelee HA, Diehn M, Alizadeh AA
    2016. doi:10.1038/nbt.3520
  3. Circulating tumor DNA profiling reveals heterogeneity of EGFR inhibitor resistance mechanisms in lung cancer patients
    NATURE COMMUNICATIONS
    Chabon JJ*, Simmons AD*, Lovejoy AF, Esfahani MS, Newman AM, Haringsma HJ, Kurtz DM, Stehr H, Scherer F, Karlovich CA, Harding TC, Durkin KA, Otterson GA, Purcell WT, Camidge DR, Goldman JW, Sequist LV, Piotrowska Z, Wakelee HA, Neal JW, Alizadeh AA, Diehn M
    2016. doi:10.1038/ncomms11815
  4. Low Input Whole-Exome Sequencing to Determine the Representation of the Tumor Exome in Circulating DNA of Non-Small Cell Lung Cancer Patients
    PLOS ONE
    Dietz S, Schirmer U, Merce C, von Bubnoff N, Dahl E, Meister M, Muley T,Thomas M, Sultmann H 2016. doi:10.1371/journal.pone.0161012
  5. Sensitive and accurate quentification of JAK2 V617F mutation in chronic myeloproliferative neoplasms by droplet digital
    PCR ANNALS OF HEMATOLOGY
    Waterhouse M, Follo M, Pfeifer D, von Bubnoff N, Duyster J, Bertz H, Finke J
    2016. doi:10.1007/s00277-016-2623-0

2015

  1. Noninvasive monitoring of diffuse large B-cell lymphoma by immunoglobulin high-throughput sequencing
    BLOOD
    Kurtz DM*, Green MR*, Bratman SV, Scherer F, Liu CL, Kunder CA, Takahashi K, Glover C, Keane C, Kihira S, Visser B, Callahan J, Kong KA, Faham M, Corbelli KS, Miklos D, Advani RH, Levy R, HIcks RJ, Hertzberg M, Ohgami RS, Gandhi MK, Diehn M, Alizadeh AA
    2015. doi:10.1182/blood-2015-03-635169

2013

  1. Detection of mutant free circulating tumor DNA in the plasma of patients with gastrointestinal stromal tumor harboring activating mutations of CKIT or PDGFRA
    CLINICAL CANCER RESEARCH
    Maier J, Lange T, Kerle I, Specht K, Bruegel M, Wickenhauser C, Jost P, Niederwieser D, Peschel C, Duyster J, von Bubnoff N
    2013. doi:10.1158/1078-0432.CCR-13-0765

Leitung
Ärztlicher Direktor

AKTUELLES

  • Herausragende Publikation:

Cell | Jun 27, 2019
Cell-Journal

Dynamic Risk Profiling Using Serial Tumor Biomarkers for Personalized Outcome Prediction

Kurtz DM*, Esfahani MS*, Scherer F*, Soo J, Jin MC, Liu CL, Newman AM, Dührsen U, Hüttmann A, Casasnovas O, Westin JR, Ritgen M, Böttcher S, Langerak AW, Roschweski M, Wilson WH, Gaidano G, Rossi D, Bahlo J, Hallek M, Tibshirani R, Diehn M, Alizadeh AA
* Co-first Autor

==> Artikel